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腺嘌呤DNA甲基化在轉錄許可染色質中的廣泛存在揭示真核生物表觀遺傳進化新機制


  市場動態     |      2025-11-19
摘要:研究針對真核生物中N6-甲基腺嘌呤(6mA)的存在與功能爭議,通過牛津納米孔測序技術對18種單細胞真核生物進行堿基分辨率6mA分析。
在真核生物表觀遺傳學領域,DNA甲基化作為基因表達的關鍵調控機制一直備受關注。5-甲基胞嘧啶(5mC)作為最典型的DNA甲基化形式,其功能和機制已被廣泛研究。然而,另一種甲基化形式——N6-甲基腺嘌呤(6mA)在真核生物中的存在和功能卻長期存在爭議。許多相互矛盾的研究報告使得科學界對6mA在真核基因組中的真實作用莫衷一是。這種不確定性主要源于方法學上的局限性,特別是檢測技術可能帶來的假象。
盡管如此,一些單細胞真系,包括纖毛蟲、早期分支真菌和藻類衣藻,確實顯示出強烈的6mA信號,這引發了關于其起源和進化作用的疑問。為了解決這些爭議,由Alex de Mendoza領導的研究團隊在《Nature Genetics》上發表了突破性研究,通過先進的技術手段揭示了6mA在真核生物中的廣泛存在和進化意義。
肥胖重塑脂肪組織中CD8+ T細胞的鐵代謝以加劇代謝性炎癥
 圖1 肥胖重塑脂肪組織中CD8+ T細胞的鐵代謝以加劇代謝性炎癥
研究人員應用牛津納米孔測序技術,以堿基對分辨率分析了代表所有主要超群的18種單細胞真核生物的6mA模式。他們發現,強烈的6mA模式僅出現在編碼腺嘌呤甲基轉移酶AMT1的物種中。值得注意的是,6mA持續積累在轉錄起始位點下游,位于H3K4me3標記的核小體之間,表明其與轉錄激活存在保守關聯。
研究團隊采用的主要技術方法包括:對231種真核生物基因組和轉錄組進行MT-A70甲基轉移酶系統發育分析;使用牛津納米孔R9.4.1和R10.4.1技術對18種真核生物進行全基因組DNA測序和修飾堿基識別;通過染色質免疫沉淀測序(ChIP-seq)分析組蛋白修飾H3K4me3和H3K27ac的分布;利用RNA-seq進行基因表達分析;并對四種真核生物進行H3K4me3抑制劑處理實驗,以研究組蛋白修飾與6mA沉積的因果關系。
AMT1是祖先基因但在真核生物中反復丟失
為了闡明MT-A70甲基轉移酶的起源和進化,研究人員檢查了231個真核生物基因組和轉錄組。系統發育分析顯示,MT-A70家族包括六個已確立的真核生物家族:AMT1、AMT6/7、AMT2/5、METTL3、METTL14和METTL4。值得注意的是,原核生物序列形成了一個獨特的進化枝,表明MT-A70具有細菌起源,在真核生物進化早期被繼承。
研究發現,所有六個MT-A70家族都存在于大多數真核生物超群中,表明它們在最后真核生物共同祖先(LECA)之前已經復制。RNA相關的METTL3和METTL14在整個物種系統發育中共同出現,模式類似于DNA相關的AMT1和AMT6/7,表明這兩種酶對在真核生物中具有保守的異源二聚體關聯。
6mA在編碼AMT1的物種中與轉錄相關
基于AMT1的分布,研究人員搜索了具有可檢測基因組6mA的真核生物譜系。為了避免細菌污染,他們專注于無菌培養的物種。研究選擇包括15個編碼AMT1的物種和3個缺乏AMT1直系同源物作為陰性對照的物種。
在所有編碼AMT1的物種中,AT是主要的甲基化背景,盡管AA也顯示出明顯的甲基化水平。ApT位點在所有編碼AMT1的物種中顯示對稱甲基化。相比之下,缺乏AMT1的物種在二核苷酸背景中的差異可忽略不計,AA二核苷酸富集程度最高。
研究人員隨后檢查了6mA的基因組分布。在缺乏AMT1的物種中,6mA在基因和轉座子(TE)中均勻出現,與背景噪聲一致。相反,在編碼AMT1的物種中,AT甲基化峰值出現在轉錄起始位點(TSS)附近。基因內6mA與基因轉錄活性相關。
階段特異性轉錄獨立于6mA發生
研究人員測試了6mA在轉錄變化時的可變性。他們選擇了變形蟲A. castellanii、真菌S. punctatus、魚孢菌C. fragrantissima和C. perkinsii,因為這些生物具有不同的細胞階段,可以在培養中分離。
所有物種在ApT和基因水平分辨率上呈現靜態的6mA甲基化組,大多數基因顯示最小的6mA差異。在N. gruberi中,使用R9納米孔化學稱為甲基化的644個基因,在23°C和30°C下顯示可比較的6mA水平,盡管使用了R10化學和不同的分析流程。當計算階段間差異表達基因的總數,并將這些與沿基因體顯示>1% 6mApT水平變化的基因重疊時,研究人員觀察到數千個基因改變表達而沒有任何可檢測的6mA改變。
5mC和6mA在真核生物中標記不同功能
由于5mC是真核生物中另一種廣泛的DNA甲基化形式,研究人員檢查了其與6mA在他們物種集中的關系。他們發現了多樣的情況——物種表現出不可檢測的5mC水平伴隨高6mA,而其他物種專門含有5mC。一些物種呈現兩種修飾,而盤基網柄菌(Dictyostelium discoideum)兩種都沒有。
研究人員發現,6mA的突變效應在富集區域最為明顯,特別是在TSS后。在大多數物種中,6mA與ApT組成沒有明顯關聯。在一些物種中,甲基化基因比未甲基化基因具有更高的ApT密度,與5mC看到的模式相反。帶有H3K4me3的核小體與6mA共定位
研究結果與先前報告一致,表明6mA在核小體連接DNA中富集。在纖毛蟲中,刪除AMT1破壞了6mA模式,導致TSS周圍核小體定位更加分散。數據集中的大多數物種也顯示周期性6mA模式。
為了探究什么塑造了6mA模式及其與核小體的聯系,研究人員對兩個TSS相關和轉錄活性組蛋白標記——組蛋白3賴氨酸4三甲基化(H3K4me3)和賴氨酸27乙酰化(H3K27ac)進行了染色質免疫沉淀測序(ChIP-seq)。
兩個組蛋白標記顯示預期的TSS后富集,峰值寬度小于1,000 bp。研究人員隨后按H3K4me3信號對基因進行分組,發現6mA與這種組蛋白標記緊密重疊。相比之下,H3K4me3峰值之外的基因組區域在所有物種中具有顯著較低的6mA水平。
為了直接測試H3K4me3沉積是否影響6mA存在,研究人員用H3K4me3抑制劑處理A. castellanii。他們使用OICR-9429和Piribedil,這些抑制劑阻斷WDR5與組蛋白甲基轉移酶的相互作用。兩種抑制劑導致H3K4me3水平的劑量依賴性降低,而總H3水平不受影響。在最高抑制劑濃度下,研究人員分析了處理和DMSO對照樣品中的6mA甲基化組。此外,6mA水平在抑制劑和對照組之間顯示最小差異,無論是全局還是在H3K4me3峰值上,表明H3K4me3不直接決定這些物種中的6mA沉積。
MT-A70 6-甲基腺嘌呤甲基轉移酶的起源與反復丟失
圖2 MT-A70 6-甲基腺嘌呤甲基轉移酶的起源與反復丟失
這項研究證實了6mA在真核生物中的廣泛存在,并追蹤其起源至最后真核生物共同祖先(LECA)。廣泛的采樣支持了一個祖先的AMT1通路,與真核生物生命樹的有爭議的根位置無關。與5mC DNMTs通過獨立細菌轉移被LECA獲取不同,6mA MT-A70甲基轉移酶可能通過單一事件從細菌供體繼承。
研究證實牛津納米孔作為6mA檢測的可靠平臺,展示了在具有不同基因組組成的物種中強大且可重復的模式。長讀長堿基對分辨率圖譜避免了其他方法的缺陷。作為一個例子,在T. vaginalis中,基于抗體的下拉表明6mA在Maverick反轉錄轉座子中富集,其中短讀長映射偽像很常見。相比之下,納米孔數據在轉錄基因上顯示強烈的周期性6mA模式,而在TE中沒有富集,與其他真核生物的模式一致。
AMT1通路反復丟失的發現挑戰了關于DNA甲基化進化的假設。與DNMTs和RNA m6A METTL3/METTL14通路類似,6mA-AMT1通路在真核生物中經常丟失。由于6mA沒有明顯的突變效應,這些丟失可能反映了進化偶然性,6mA的作用被替代機制補償。這在現存真核生物中產生了6mA和5mC的不同組合。
因此,6mA與轉錄強烈相關,在高度表達基因中富集,但其動態性似乎有限。在數據集中的五個物種中,6mA在轉錄擾動下顯示微小變化。在另一個最近發表的例子中,真菌Phycomyces blakesleeanus和Mucor lusitanicus也顯示適度的6mA動態,盡管有處理特定的轉錄變化。類似地,纖毛蟲和M. lusitanicus中的AMT1敲除導致有限的轉錄變化,而發育轉錄變化很少改變5mC模式。
6mA在核小體定位中的功能仍不清楚,因為具有突變AMT1的纖毛蟲表現無序核小體,但通常仍然可行,主要在性繁殖中致命地受影響。考慮到H3K4me3作為TSS后標記的廣泛存在,即使在缺乏6mA的物種中,后者可能非必需或容易在該區域被替代。值得注意的是,H3K4me3和H2A.Z通常與真核生物中的5mC反相關,因此H3K4me3-6mA聯系可能進一步促進染色質區室化。
在魚孢菌中,p1 PHD域表明可能的H3K4me3識別。因此,H3K4me3-6mA之間的層次關系可能獨立進化,或者它們的共存可能僅僅反映轉錄的下游結果,而不是直接因果聯系。生物物理上,6mA被認為降低雙鏈DNA穩定性,這種效應可能有利于高度表達基因起始處的轉錄。然而,要理解6mA作為表觀遺傳標記的作用,識別潛在閱讀器是關鍵。類似地,盡管5mC使DNA變硬,但其在真核生物中的功能更依賴于相關閱讀器或抑制轉錄因子結合,而不是內在生物物理特性。
有趣的是,5mC主要保留在主要多細胞真核生物譜系(植物、動物和雙核菌)中,而AMT1-6mA通路在這些譜系中丟失。在植物和動物中,5mC進化為甲基化基因體,取代TSS后區域中的6mA,但這種替代不可能是6mA丟失的唯一原因。植物和動物的單細胞親屬具有與6mA共存的基因體5mC,表明6mA和5mC具有獨特作用,即使發現在相同區域。
總之,這些數據重塑了對6mA功能和進化的理解,強調6mA和5mC都是原始真核生物染色質工具包的組成部分。盡管纖毛蟲引領了我們對真核生物中6mA的理解,它們 drastically 不尋常的基因組組織,具有小核和大核,以及MT-A70s的譜系特異性擴展,將受益于來自替代譜系的補充見解。通過將分類單元采樣擴展到具有規范基因組的易處理物種,這項工作為闡明6mA功能和理解為什么該通路在主要多細胞譜系中丟失奠定了基礎。
參考資料
[1] Adenine DNA methylation associated with transcriptionally permissive chromatin is widespread across eukaryotes

 

摘要:研究針對真核生物中N6-甲基腺嘌呤(6mA)的存在與功能爭議,通過牛津納米孔測序技術對18種單細胞真核生物進行堿基分辨率6mA分析。
在真核生物表觀遺傳學領域,DNA甲基化作為基因表達的關鍵調控機制一直備受關注。5-甲基胞嘧啶(5mC)作為最典型的DNA甲基化形式,其功能和機制已被廣泛研究。然而,另一種甲基化形式——N6-甲基腺嘌呤(6mA)在真核生物中的存在和功能卻長期存在爭議。許多相互矛盾的研究報告使得科學界對6mA在真核基因組中的真實作用莫衷一是。這種不確定性主要源于方法學上的局限性,特別是檢測技術可能帶來的假象。
盡管如此,一些單細胞真系,包括纖毛蟲、早期分支真菌和藻類衣藻,確實顯示出強烈的6mA信號,這引發了關于其起源和進化作用的疑問。為了解決這些爭議,由Alex de Mendoza領導的研究團隊在《Nature Genetics》上發表了突破性研究,通過先進的技術手段揭示了6mA在真核生物中的廣泛存在和進化意義。
肥胖重塑脂肪組織中CD8+ T細胞的鐵代謝以加劇代謝性炎癥
 圖1 肥胖重塑脂肪組織中CD8+ T細胞的鐵代謝以加劇代謝性炎癥
研究人員應用牛津納米孔測序技術,以堿基對分辨率分析了代表所有主要超群的18種單細胞真核生物的6mA模式。他們發現,強烈的6mA模式僅出現在編碼腺嘌呤甲基轉移酶AMT1的物種中。值得注意的是,6mA持續積累在轉錄起始位點下游,位于H3K4me3標記的核小體之間,表明其與轉錄激活存在保守關聯。
研究團隊采用的主要技術方法包括:對231種真核生物基因組和轉錄組進行MT-A70甲基轉移酶系統發育分析;使用牛津納米孔R9.4.1和R10.4.1技術對18種真核生物進行全基因組DNA測序和修飾堿基識別;通過染色質免疫沉淀測序(ChIP-seq)分析組蛋白修飾H3K4me3和H3K27ac的分布;利用RNA-seq進行基因表達分析;并對四種真核生物進行H3K4me3抑制劑處理實驗,以研究組蛋白修飾與6mA沉積的因果關系。
AMT1是祖先基因但在真核生物中反復丟失
為了闡明MT-A70甲基轉移酶的起源和進化,研究人員檢查了231個真核生物基因組和轉錄組。系統發育分析顯示,MT-A70家族包括六個已確立的真核生物家族:AMT1、AMT6/7、AMT2/5、METTL3、METTL14和METTL4。值得注意的是,原核生物序列形成了一個獨特的進化枝,表明MT-A70具有細菌起源,在真核生物進化早期被繼承。
研究發現,所有六個MT-A70家族都存在于大多數真核生物超群中,表明它們在最后真核生物共同祖先(LECA)之前已經復制。RNA相關的METTL3和METTL14在整個物種系統發育中共同出現,模式類似于DNA相關的AMT1和AMT6/7,表明這兩種酶對在真核生物中具有保守的異源二聚體關聯。
6mA在編碼AMT1的物種中與轉錄相關
基于AMT1的分布,研究人員搜索了具有可檢測基因組6mA的真核生物譜系。為了避免細菌污染,他們專注于無菌培養的物種。研究選擇包括15個編碼AMT1的物種和3個缺乏AMT1直系同源物作為陰性對照的物種。
在所有編碼AMT1的物種中,AT是主要的甲基化背景,盡管AA也顯示出明顯的甲基化水平。ApT位點在所有編碼AMT1的物種中顯示對稱甲基化。相比之下,缺乏AMT1的物種在二核苷酸背景中的差異可忽略不計,AA二核苷酸富集程度最高。
研究人員隨后檢查了6mA的基因組分布。在缺乏AMT1的物種中,6mA在基因和轉座子(TE)中均勻出現,與背景噪聲一致。相反,在編碼AMT1的物種中,AT甲基化峰值出現在轉錄起始位點(TSS)附近。基因內6mA與基因轉錄活性相關。
階段特異性轉錄獨立于6mA發生
研究人員測試了6mA在轉錄變化時的可變性。他們選擇了變形蟲A. castellanii、真菌S. punctatus、魚孢菌C. fragrantissima和C. perkinsii,因為這些生物具有不同的細胞階段,可以在培養中分離。
所有物種在ApT和基因水平分辨率上呈現靜態的6mA甲基化組,大多數基因顯示最小的6mA差異。在N. gruberi中,使用R9納米孔化學稱為甲基化的644個基因,在23°C和30°C下顯示可比較的6mA水平,盡管使用了R10化學和不同的分析流程。當計算階段間差異表達基因的總數,并將這些與沿基因體顯示>1% 6mApT水平變化的基因重疊時,研究人員觀察到數千個基因改變表達而沒有任何可檢測的6mA改變。
5mC和6mA在真核生物中標記不同功能
由于5mC是真核生物中另一種廣泛的DNA甲基化形式,研究人員檢查了其與6mA在他們物種集中的關系。他們發現了多樣的情況——物種表現出不可檢測的5mC水平伴隨高6mA,而其他物種專門含有5mC。一些物種呈現兩種修飾,而盤基網柄菌(Dictyostelium discoideum)兩種都沒有。
研究人員發現,6mA的突變效應在富集區域最為明顯,特別是在TSS后。在大多數物種中,6mA與ApT組成沒有明顯關聯。在一些物種中,甲基化基因比未甲基化基因具有更高的ApT密度,與5mC看到的模式相反。帶有H3K4me3的核小體與6mA共定位
研究結果與先前報告一致,表明6mA在核小體連接DNA中富集。在纖毛蟲中,刪除AMT1破壞了6mA模式,導致TSS周圍核小體定位更加分散。數據集中的大多數物種也顯示周期性6mA模式。
為了探究什么塑造了6mA模式及其與核小體的聯系,研究人員對兩個TSS相關和轉錄活性組蛋白標記——組蛋白3賴氨酸4三甲基化(H3K4me3)和賴氨酸27乙酰化(H3K27ac)進行了染色質免疫沉淀測序(ChIP-seq)。
兩個組蛋白標記顯示預期的TSS后富集,峰值寬度小于1,000 bp。研究人員隨后按H3K4me3信號對基因進行分組,發現6mA與這種組蛋白標記緊密重疊。相比之下,H3K4me3峰值之外的基因組區域在所有物種中具有顯著較低的6mA水平。
為了直接測試H3K4me3沉積是否影響6mA存在,研究人員用H3K4me3抑制劑處理A. castellanii。他們使用OICR-9429和Piribedil,這些抑制劑阻斷WDR5與組蛋白甲基轉移酶的相互作用。兩種抑制劑導致H3K4me3水平的劑量依賴性降低,而總H3水平不受影響。在最高抑制劑濃度下,研究人員分析了處理和DMSO對照樣品中的6mA甲基化組。此外,6mA水平在抑制劑和對照組之間顯示最小差異,無論是全局還是在H3K4me3峰值上,表明H3K4me3不直接決定這些物種中的6mA沉積。
MT-A70 6-甲基腺嘌呤甲基轉移酶的起源與反復丟失
圖2 MT-A70 6-甲基腺嘌呤甲基轉移酶的起源與反復丟失
這項研究證實了6mA在真核生物中的廣泛存在,并追蹤其起源至最后真核生物共同祖先(LECA)。廣泛的采樣支持了一個祖先的AMT1通路,與真核生物生命樹的有爭議的根位置無關。與5mC DNMTs通過獨立細菌轉移被LECA獲取不同,6mA MT-A70甲基轉移酶可能通過單一事件從細菌供體繼承。
研究證實牛津納米孔作為6mA檢測的可靠平臺,展示了在具有不同基因組組成的物種中強大且可重復的模式。長讀長堿基對分辨率圖譜避免了其他方法的缺陷。作為一個例子,在T. vaginalis中,基于抗體的下拉表明6mA在Maverick反轉錄轉座子中富集,其中短讀長映射偽像很常見。相比之下,納米孔數據在轉錄基因上顯示強烈的周期性6mA模式,而在TE中沒有富集,與其他真核生物的模式一致。
AMT1通路反復丟失的發現挑戰了關于DNA甲基化進化的假設。與DNMTs和RNA m6A METTL3/METTL14通路類似,6mA-AMT1通路在真核生物中經常丟失。由于6mA沒有明顯的突變效應,這些丟失可能反映了進化偶然性,6mA的作用被替代機制補償。這在現存真核生物中產生了6mA和5mC的不同組合。
因此,6mA與轉錄強烈相關,在高度表達基因中富集,但其動態性似乎有限。在數據集中的五個物種中,6mA在轉錄擾動下顯示微小變化。在另一個最近發表的例子中,真菌Phycomyces blakesleeanus和Mucor lusitanicus也顯示適度的6mA動態,盡管有處理特定的轉錄變化。類似地,纖毛蟲和M. lusitanicus中的AMT1敲除導致有限的轉錄變化,而發育轉錄變化很少改變5mC模式。
6mA在核小體定位中的功能仍不清楚,因為具有突變AMT1的纖毛蟲表現無序核小體,但通常仍然可行,主要在性繁殖中致命地受影響。考慮到H3K4me3作為TSS后標記的廣泛存在,即使在缺乏6mA的物種中,后者可能非必需或容易在該區域被替代。值得注意的是,H3K4me3和H2A.Z通常與真核生物中的5mC反相關,因此H3K4me3-6mA聯系可能進一步促進染色質區室化。
在魚孢菌中,p1 PHD域表明可能的H3K4me3識別。因此,H3K4me3-6mA之間的層次關系可能獨立進化,或者它們的共存可能僅僅反映轉錄的下游結果,而不是直接因果聯系。生物物理上,6mA被認為降低雙鏈DNA穩定性,這種效應可能有利于高度表達基因起始處的轉錄。然而,要理解6mA作為表觀遺傳標記的作用,識別潛在閱讀器是關鍵。類似地,盡管5mC使DNA變硬,但其在真核生物中的功能更依賴于相關閱讀器或抑制轉錄因子結合,而不是內在生物物理特性。
有趣的是,5mC主要保留在主要多細胞真核生物譜系(植物、動物和雙核菌)中,而AMT1-6mA通路在這些譜系中丟失。在植物和動物中,5mC進化為甲基化基因體,取代TSS后區域中的6mA,但這種替代不可能是6mA丟失的唯一原因。植物和動物的單細胞親屬具有與6mA共存的基因體5mC,表明6mA和5mC具有獨特作用,即使發現在相同區域。
總之,這些數據重塑了對6mA功能和進化的理解,強調6mA和5mC都是原始真核生物染色質工具包的組成部分。盡管纖毛蟲引領了我們對真核生物中6mA的理解,它們 drastically 不尋常的基因組組織,具有小核和大核,以及MT-A70s的譜系特異性擴展,將受益于來自替代譜系的補充見解。通過將分類單元采樣擴展到具有規范基因組的易處理物種,這項工作為闡明6mA功能和理解為什么該通路在主要多細胞譜系中丟失奠定了基礎。
參考資料
[1] Adenine DNA methylation associated with transcriptionally permissive chromatin is widespread across eukaryotes